Veselības aprūpes nodalījumu un vides tīrīšana, dezinfekcija un sterilizācija
Tīrīšana, dezinfekcija un sterilizācija ir infekciju profilakses un kontroles stūrakmeņi veselības aprūpes telpās un vidēs
Neraugoties uz šiem pierādījumiem, ir daudzas situācijas, kurās šo procedūru trūkst vai pat tās nav, un kurās darbinieki ir slikti vai nepietiekami apmācīti.
Tīrīšana, dezinfekcija un sterilizācija, daži pamatjēdzieni:
TĪRĪŠANA UN PRIEKŠTĪRĪŠANA
Lai gan “tīrīšana” nozīmē redzamu netīrumu noņemšanu, termins “priekštīrīšana” attiecas uz ķermeņa šķidrumu un citu piesārņotāju noņemšanu pirms dezinfekcijas vai sterilizācijas.
Atbilstoša iepriekšēja tīrīšana var būtiski samazināt patogēnu mikrobu slodzi, savukārt organisko un neorganisko atlikumu noņemšana var atvieglot atjaunošanas procesu.
Rūpīga tīrīšana ir būtiska efektīvai dezinfekcijai vai sterilizācijai
Efektīvai ierīču tīrīšanai un iepriekšējai tīrīšanai bieži vien ir nepieciešamas ķīmiskas vielas, kas apvienotas ar mehānisku iedarbību un karstumu.
To var veikt manuāli un/vai ar automatizētām iekārtām.
Manuālajai iepriekšējai tīrīšanai ir jāizmanto mazgāšanas līdzekļi vai fermenti, kas apvienoti ar mehānisku darbību, ko veic operators (berzēšana, tīrīšana, skalošana), lai noņemtu netīrumus no atkārtoti apstrādājamo ierīču ārpuses un iekšpuses.
Pēc tīrīšanas vai dezinfekcijas ierīces rūpīgi jāizskalo, lai noņemtu jebkādus ķīmisko vielu atlikumus, un pēc tam tās jāizžāvē, kā ieteicis ražotājs.
Visas pārstrādātās ierīces ir pareizi jāuzglabā, lai izvairītos no bojājumiem vai atkārtotas inficēšanas.
TĪRĪŠANA, DEZINFEKCIJA UN STERILIZĀCIJA: LĪDZES KLASIFIKĀCIJA
1968. gadā Spaulding klasificēja medicīniskās/ķirurģijas ierīces kā kritiskas, daļēji kritiskas un nekritiskas, pamatojoties uz to potenciālu izplatīt infekciju.
Kritiskās ierīces parasti nonāk sterilos audos, asinsvadu sistēmā vai sistēmās, caur kurām plūst asinis; piemēri ir ķirurģiskie instrumenti un asinsvadu katetri.
Šīs ierīces pirms lietošanas ir pareizi un droši iepriekš jāiztīra un jāsterilizē.
Daļēji kritiskās ierīces nonāk saskarē ar neskartu gļotādu vai neskartu ādu; piemēri ir optisko šķiedru endoskopi, maksts zondes un elpošana iekārta.
Šiem priekšmetiem pirms lietošanas ir nepieciešama atbilstoša iepriekšēja tīrīšana un vismaz augsta līmeņa dezinfekcija.
Nekritiskām ierīcēm (piemēram, asinsspiediena manšetēm, stetoskopiem), kas nonāk saskarē ar neskartu ādu, ir zems infekciju izplatīšanās risks, izņemot patogēnu nodošanu veselības aprūpes personāla rokās.
Parasti pietiek ar šo ierīču periodisku tīrīšanu un noslaucīšanu ar neitrālu mazgāšanas līdzekli vai 70% ūdens un etanola šķīdumu (atkārtoti lietojamām gultas tvertnēm, lai gan tās tiek uzskatītas par nekritiskām ierīcēm, nepieciešama stingrāka tīrīšana, mazgāšana un dezinfekcija, īpaši, ja tās ir piesārņotas ar piemēram, ir aizdomas par vankomicīnu rezistentiem enterokokiem vai Clostridium difficile).
Lielākā daļa vides virsmu pacientu telpā un uzgaidāmajās telpās ir jāuzskata par nekritiskām, un tām nav nepieciešama regulāra dezinfekcija.
Tomēr virsmas ar augstu saskares biežumu, īpaši tās, kas atrodas pacienta tiešā tuvumā, ir regulāri jādekontaminē, lai izvairītos no patogēnu pārnešanas aprūpes personāla rokās.
Jaunākajās vadlīnijās nav konkrētas norādes par to, vai, kad, kā un cik bieži šādas virsmas ir jādezinficē. 9,10.
Lai gan Spaulding 7 klasifikācijas sistēma paliek spēkā, tā ir jāpielāgo pašreizējām vajadzībām.
Prioni ar savu neparasto rezistenci pret fizikāliem un ķīmiskiem faktoriem 11 un ar aprūpi saistītu infekciju rašanos, ko izraisa Clostridium difficile sporas 10 vai karbapenēmiski rezistenti Enterobacteriaceae 12 , veic atkārtotu medicīnisko ierīču pārstrādes pārbaudi.
Ierīcēm, kas piesārņotas ar prioniem, ir nepieciešami sterilizācijas protokoli, kas ir daudz plašāki par parasti lietotajiem 11.
Dažiem dezinfekcijas līdzekļiem (piemēram, aldehīdiem), ko parasti izmanto kuņģa-zarnu trakta endoskopu pārstrādei, ir nepieciešams ilgāks saskares laiks, lai iznīcinātu C. difficile sporas.
Karstumjutīgas ierīces, piemēram, elastīgie optiskās šķiedras endoskopi, arvien vairāk tiek izmantotas operācijām, kurās apzināti tiek pārkāpta gļotādas integritāte, tādējādi šķērsojot robežu starp “kritiskajām” un “puskritiskajām” ierīcēm.
MEDICĪNAS IERĪČU PĀRSTRĀDE: DEZINFEKCIJA
“Dezinfekcija” nozīmē patogēnu skaita samazināšanu uz nedzīvas virsmas vai objekta, izmantojot siltumu, ķīmiskas vielas vai abus.
Lielākajai daļai dezinfekcijas procedūru ir maza aktivitāte pret baktēriju sporām; jebkurš sporu daudzuma samazinājums galvenokārt tiek panākts ar mehānisku darbību un mazgāšanu.
ITĀLIJĀ IEKĀRTOTĀS AMBULĀCIJAS PIRMĀS SKAITS: APMEKLĒJIET ORION BOOTH AVĀRIJAS EXPO
TĪRĪŠANA, DEZINFEKCIJA UN STERILIZĀCIJA: PASTERIZĀCIJA UN VĀRĪŠANA
Daļēji kritiskās ierīces, piemēram, tās, ko izmanto elpošanas terapijā vai anestēzijas iekārtās, var pasterizēt, karsējot ūdenī.
Visām to daļām jāpaliek pilnībā iegremdētām vismaz 30 minūtes 65–77°C temperatūrā.
Vietās lielākā augstumā ir nepieciešams vairāk laika, lai sasniegtu ūdens viršanas temperatūru, jo tas palielinās, attālinoties no jūras līmeņa. 13
Karstumizturīgu ierīču mērcēšana verdošā ūdenī apmēram 10 minūtes var ievērojami samazināt patogēnu mikrobu daudzumu, taču to nekādā gadījumā nevajadzētu uzskatīt par “sterilizāciju”.
Tāpēc pasterizācija un vārīšana ir zemu tehnoloģiju metodes, bez ķīmiskām vielām (ja vien ūdens ir tīrs); pēc apstrādes ar priekšmetiem ir jārīkojas uzmanīgi, lai nodrošinātu drošu transportēšanu un uzglabāšanu.
TĪRĪŠANA, DEZINFEKCIJA UN STERILIZĀCIJA: ĶĪMISKĀ DEZINFEKCIJA
Izplatītākie ķīmiskie dezinfekcijas līdzekļi ir spirti, hlors un hlora savienojumi, glutaraldehīds, orto-ftalaldehīds, ūdeņraža peroksīds, pereetiķskābe, fenoli un ceturtā amonija savienojumi (CAQ).
Šīs ķīmiskās vielas var lietot atsevišķi vai kombinācijā.
Tie jāizmanto saskaņā ar ražotāja norādījumiem uz produkta etiķetes un tikai uz virsmām, ar kurām tie ir saderīgi.
Ideālā gadījumā komerciāliem produktiem ir jāiziet standarta testi, lai apstiprinātu to, kas norādīts uz etiķetes, pirms tos pārdod un izmanto veselības aprūpes iestādēs.
Tomēr prasības attiecībā uz produktu reģistrāciju un etiķetē norādīto informāciju dažādos reģionos ir ļoti atšķirīgas.
Ķīmiskie dezinfekcijas līdzekļi ļoti atšķiras pēc kaitīgās ietekmes, ko tie var radīt cilvēkiem un videi; tie jālieto uzmanīgi un tikai tad, ja nav pieejamas dzīvotspējīgas alternatīvas.
Dezinfekcijas līdzekļi tiek iedalīti trīs kategorijās pēc to mikrobicīdās aktivitātes: Augsta līmeņa dezinfekcijas līdzekļi
Augsta līmeņa dezinfekcijas līdzekļi (DAL) ir aktīvi pret baktērijām veģetatīvā formā, vīrusiem (tostarp neslēptiem vīrusiem), sēnītēm un mikobaktērijām. Ar ilgstošu saskares laiku tiem var būt arī aktivitāte pret baktēriju sporām.
DAL izmanto, lai dezinficētu karstumjutīgas ierīces un puskritiskas ierīces, piemēram, elastīgus optiskās šķiedras endoskopus.
Aldehīdi (glutaraldehīds un ortoftalaldehīds) un oksidētāji (piemēram, ūdeņraža peroksīds un peretiķskābe) ir DAL.
Aldehīdi nav kodīgi un ir droši lietošanai lielākajā daļā ierīču.
Tomēr tie var veicināt organisko materiālu saķeri; tādēļ ir īpaši svarīgi pirms dezinfekcijas noņemt visus pievienotos mikroorganismus.
Ja oksidētāji nav pareizi formulēti un izmantoti, tie var būt kodīgi.
Tomēr tie var būt ātrākas darbības, nefiksējoši un videi drošāki nekā aldehīdi.
Atkarībā no temperatūras DAL parasti prasa 10 līdz 45 minūtes kontakta laika.
Pēc dezinfekcijas ierīces rūpīgi jānomazgā ar sterilu vai mikrofiltrētu ūdeni, lai noņemtu visas ķīmiskās vielas; pēc tam ierīces pirms uzglabāšanas jāizžāvē, izlaižot spirtu saturošu šķīdumu vai izpūšot tīru, filtrētu gaisu caur ierīces kanāliem.
Vidēja līmeņa dezinfekcijas līdzekļi
Dezinfekcijas līdzeklis (piemēram, etanols), kas iedarbojas pret baktērijām veģetatīvā formā, mikobaktērijām, micētiem un lielāko daļu vīrusu.
Pat pēc ilgstošas iedarbības tas var nespēt iznīcināt sporas.
Zema līmeņa dezinfekcijas līdzekļi
Zema līmeņa dezinfekcijas līdzekļi (piemēram, ceturtā amonija savienojumi) ir aktīvi pret baktērijām veģetatīvā formā (izņemot mikobaktērijas), dažiem micētiem un tikai pārklātiem vīrusiem.
Daudzos gadījumos šādu dezinfekcijas līdzekļu vietā pietiktu ar mazgāšanu ar ne-antiseptiskām ziepēm un ūdeni.
STERILIZĀCIJA
Sterilizācija ir jebkurš process, kas var inaktivēt visus mikroorganismus, kas atrodas objektā vai uz tā; standarta sterilizācijas procedūrām var būt nepieciešamas izmaiņas prionu darbībā.11
Siltums ir visdrošākais sterilizācijas līdzeklis; lielākā daļa ķirurģisko instrumentu ir karstumizturīgi.
Mitrs siltums, ko izmanto autoklāvā kā tvaiku zem spiediena, nogalina mikroorganismus, denaturējot to proteīnus.
Sausais karstums, ko izmanto cepeškrāsnī, nogalina oksidācijas rezultātā, kas notiek daudz lēnāk.
Sauso siltumu izmanto, lai sterilizētu mitrumjutīgus materiālus (bezūdens pulveri) vai priekšmetus, kuriem tvaiks nevar iekļūt (eļļas un vaski).
Siltumjutīgām ierīcēm nepieciešama zemas temperatūras sterilizācija; Šim nolūkam bieži izmanto etilēnoksīdu (EO), ūdeņraža peroksīda gāzes plazmu un formaldehīda tvaiku.14
Sterilizētās ierīces jāuzglabā tīrā, bez putekļiem un sausā vietā, un ir jāgarantē iepakojuma integritāte.
Iepakojumi, kas satur sterilus materiālus, pirms lietošanas ir jāpārbauda, vai tie ir necaurlaidīgi un nav mitruma.
Ja iepakojums ir bojāts, ierīces nedrīkst lietot, bet gan tīrīt, iepakot un vēlreiz sterilizēt.
Sterilizācija ar tvaiku Tvaiks ir visdrošākais sterilizācijas līdzeklis.
Tas ir netoksisks (ja tiek iegūts no ūdens, kurā nav gaistošu ķīmisku vielu), tam ir plaša spektra mikrobicīda aktivitāte un laba iespiešanās spēja, un tas ir lēts un viegli kontrolējams.15,16
Sterilizācijai nepieciešams tiešs kontakts starp sterilizējamo objektu un tvaiku vajadzīgajā temperatūrā un spiedienā noteiktu laiku.
Autoklāvi ir īpaši izveidotas kameras, kurās tvaiks zem spiediena rada augstu temperatūru.
Tie ir balstīti uz to pašu principu kā spiediena katls.
Ir divi galvenie tvaika sterilizatoru veidi:
– Autoklāvos ar gravitācijas (uz leju) noņemšanu kameras augšpusē tiek ievadīts tvaiks, lai noņemtu vēsāku, blīvāku gaisa un tvaika maisījumu no kameras apakšas. Izplūdes vārsts aizveras, kad viss gaiss ir izvadīts, ļaujot paaugstināt spiedienu un temperatūru. Šādus autoklāvus izmanto, lai sterilizētu šķidrumus un priekšmetus iežogojumos, kuros tvaiks spēj iekļūt. Sterilizācijas fāze parasti ilgst aptuveni 15 minūtes 121°C temperatūrā pie 103.4 kilopaskāliem (15 mārciņas/kvadrātcollā).
– Augsta vakuuma autoklāvos sterilizācijas kamerā vispirms tiek izveidots vakuums un pēc tam tiek ievadīts tvaiks, kas ļauj ātrāk un efektīvāk ieplūst tvaikā visā kravā. Strauji augošais spiediens un temperatūra nodrošina trīs minūšu procesu 134°C temperatūrā pie aptuveni 206.8 kilopaskāliem (30 mārciņas/kvadrātcollā).
Autoklāvējamie instrumenti jāiesaiņo materiālos, kas ļauj tvaikam iekļūt un saglabāt apstrādāto ierīci sterilu uzglabāšanas laikā.
Jāizvairās no autoklāva pārslodzes, lai nodrošinātu brīvu piekļuvi tvaikam visā slodzes laikā.
Uz iepakojumiem jābūt marķētiem, lai identificētu to saturu un sterilizācijas datumu, kā arī operatora sērijas numuru un cikla numuru, lai atvieglotu atsaukšanu un atvieglotu krājumu rotāciju.
Visi tvaika sterilizatori ir jāanalizē uzstādīšanas laikā un regulāri pēc tam; ir jāveic visu darbību un kārtējās apkopes uzskaite. Visam personālam jābūt rūpīgi apmācītam drošai autoklāva lietošanai6.
TĪRĪŠANAS, DEZINFEKCIJAS UN STERILIZĀCIJAS PROCESU KONTROLE
Ir pieejami bioloģiskie un ķīmiskie indikatori, un tie ir jāizmanto autoklāvu regulārai uzraudzībai.
Bioloģiskie indikatori (IB) satur baktērijas Geobacillus stearothermophilus sporas.
Tirdzniecībā pieejamas sporas vai pudeles ar sporām ir stratēģiski novietotas sterilizējamajā kravā.
Pēc viena cikla IB tiek kultivēti vai novērtēti, lai tie augtu, un tiem nedrīkst būt nekādu augšanu, lai nodrošinātu veiksmīgu sterilizāciju.
Ķīmiskos indikatorus (KI) izmanto, lai novērtētu, vai sterilizācijas procesā ir sasniegts nepieciešamais laiks un temperatūra.
CI piemērs ir autoklāva lente, ko var piestiprināt iepakojuma ārpusei; lentē redzama krāsas maiņa, ja iepakojums ir bijis pakļauts karstumam.
Lai gan IC nav piemērotas, lai norādītu, vai produkts ir sterilizēts, tie var palīdzēt atklāt aprīkojuma darbības traucējumus un noteikt procedūras kļūdas.
Augsta vakuuma procesam tvaika iekļūšana slodzē ir atkarīga no atbilstošas gaisa noņemšanas.
To var pārbaudīt divos veidos:
1) Ar "noplūdes pārbaudi": vai vakuumu var uzturēt vai gaiss izplūst? (bieži ap vāku).
2) Ar tvaiku spēju iekļūt nelielā dvieļu iepakojumā, kas izmantots Bovija Dika testā.
Ja šo pārbaužu rezultāti ir apmierinoši, alternatīva pārbaude ir “parametriskā atbrīvošana”.
Šī sistēma ir balstīta uz pārbaudi, vai sterilizācijas cikls atbilst visām temperatūras, spiediena un laika specifikācijām, izmantojot kalibrētus instrumentus papildus IB vai to vietā.
Tā kā šī pieeja ir balstīta uz izmērāmiem datiem un kalibrētiem instrumentiem, rezultāti parasti ir ticamāki un daudz ātrāki nekā izmantojot IB.
CITI STERILIZĒJI
Tvaiks tiek izmantots arī divu citu veidu sterilizatoros.
Zemas temperatūras tvaika-formaldehīda procesā tvaiku (50-80°C) ar formaldehīdu gāzveida stāvoklī izmanto, lai sterilizētu termiski jutīgas medicīnas ierīces (arī tās ar ierobežotu lūmenu).
Kā parasti, ierīces tiek iztīrītas un pēc tam apstrādātas. Pirmkārt, tiek izveidots vakuums; tvaiku ievada secīgās strūklās, kam seko formaldehīda iztvaicēšana.
Cikla beigās formaldehīds tiek noņemts un autoklāvs tiek pilnībā iztukšots ar vairākām tvaika strūklām un augstu vakuumu.
Sterilizatora darbības uzraudzībai tiek izmantoti ķīmiskie un bioloģiskie indikatori.
Šo sistēmu nevar izmantot ar šķidrumiem, un formaldehīda iespējamā toksicitāte joprojām ir problēma.
Ātrā vai tūlītējā sterilizācijas procesā (zibsterilizācija) tvaiku izmanto, lai apstrādātu kritiskas ierīces, piemēram, ķirurģiskas ierīces, kas nejauši piesārņotas operācijas laikā vai ja nav pieejami citi sterilizācijas līdzekļi.
To nekad nedrīkst izmantot implantējamām ierīcēm vai būtisku ierīču trūkuma kompensēšanai.
Ātrā porainu vai neporainu priekšmetu sterilizācijā nav iespējams izmantot autoklāvu ar gravitācijas tvaika noņemšanu vai augstu vakuumu bez iesaiņojuma vai izmantojot vienu aptinumu.
Nav iespējams gaidīt izmantoto IB nolasījumu, jo ierīces tiek atkārtoti apstrādātas.
Ja netiek izmantoti atbilstoši konteineri, pastāv augsts apstrādāto priekšmetu atkārtotas inficēšanās risks un arī personāla apdegumu risks transportēšanas laikā uz lietošanas vietu.
MIKROVIĻŅI
Pakļaujot ūdeni saturošus priekšmetus mikroviļņu iedarbībai, rodas siltums berzes dēļ, ko rada ūdens molekulu strauja rotācija.
Līdz šim šis process ir izmantots tikai mīksto kontaktlēcu dezinfekcijai un urīna katetru kauterizācijai.
Tomēr nelielu ūdens daudzumu var padarīt drošu pārtikai, pakļaujot mikroviļņus stikla vai plastmasas traukā.
Līdzīgi mazus stikla vai plastmasas priekšmetus var iegremdēt ūdenī un “dezinficēt” mikroviļņu krāsnī.
SERILIZĀCIJA SAUSĀ KARTUMA
Karstā gaisa krāsnis tiek izmantotas sausā karstuma sterilizācijai.
Tie var sasniegt augstu temperatūru, un tiem jābūt aprīkotiem ar ventilatoru vienmērīgai siltuma sadalei.
Iepriekšēja uzsildīšana būtībā notiek pirms sterilizācijas cikla uzsākšanas.
Karstā gaisa krāsnis ir vienkāršākas konstrukcijas un drošākas lietošanā nekā autoklāvi, un tās ir piemērotas stikla trauku, metāla priekšmetu, pulveru un bezūdens materiālu (eļļas un tauku) sterilizēšanai.
Sterilizācija ilgst divas stundas 160 ° C temperatūrā vai vienu stundu 180 ° C temperatūrā.
Gumiju, papīru un audumu nedrīkst apstrādāt, lai izvairītos no aizdegšanās riska.
ETILĒNA OKSĪDS
Etilēna oksīdu (EO) izmanto, lai sterilizētu priekšmetus, kas ir jutīgi pret karstumu, spiedienu vai mitrumu.
EO ir bezkrāsaina, uzliesmojoša, sprādzienbīstama gāze, kas ir toksiska cilvēkiem.
OE ir pieejams kā gāzveida maisījums ar daļēji halogenētiem hlorfluorogļūdeņražiem (IFCC) vai arī ir 8.5% OE un 91.5% oglekļa dioksīda maisījums; pēdējais ir lētāks.
Lai nodrošinātu sterilizāciju, procesa laikā EO koncentrācija, temperatūra, relatīvais mitrums un iedarbība jāuztur pareizajā līmenī.
Gāzes koncentrācijai jābūt no 450 līdz 1200 mg/L, temperatūrai no 37° līdz 63°C, relatīvajam mitrumam no 40% līdz 80%, un iedarbībai jābūt no 1 līdz 6 stundām.
Parametru vērtību izlaišana nav iespējama, jo nav viegli izmērīt gāzes koncentrāciju un relatīvo mitrumu; IB ir jāiekļauj katrā slodzē.
Ieteicamais IB ir Bacillus atrophaeus; slodzes jātur karantīnā, līdz IB inkubācija ir pabeigta.
Sterilizācijas ar oriģinālo iekārtu galvenie trūkumi ir ilgs cikla laiks un augstās izmaksas.
Pēc procesa sterilizētajiem priekšmetiem jābūt labi vēdinātiem, lai pacienta drošības nolūkos noņemtu visus OE atlikumus.
ŪDEŅRAŽA PEROKSĪDA PLAZMAS GĀZE
Plazmas gāzi ģenerē slēgtā kamerā augstā vakuumā, izmantojot radiofrekvences vai mikroviļņu enerģiju, lai ierosinātu ūdeņraža peroksīda gāzes molekulas un radītu lādētas daļiņas, no kurām daudzas ir ļoti reaģējoši brīvie radikāļi.
Plazmas gāzi var izmantot, lai sterilizētu pret karstumu un mitrumu jutīgus priekšmetus, piemēram, noteiktas plastmasas, elektriskās/elektroniskās ierīces un pret koroziju jutīgus metālu sakausējumus.
G. stearothermophilus sporas izmanto kā IB.
Tas ir drošs process, un, tā kā nav nepieciešama aerācija, sterilizēti priekšmeti ir pieejami tūlītējai lietošanai vai gatavi uzglabāšanai.
Tomēr tas nav piemērots ierīcēm ar neredzamiem kanāliem, pulveriem vai šķidrumiem.
Citi trūkumi ir augstās izmaksas un nepieciešamība pēc īpaša iepakojuma materiāla, jo nevar izmantot papīru vai linu.
Turklāt visi šķidrie vai organiskie atlikumi traucē procesu.
FUMIGĀCIJA
Pēdējā laikā ir pieaugusi interese par fumigantu izmantošanu vidē, lai apkarotu veselībai kaitīgus patogēnus, piemēram, pret meticilīnu rezistentu S. aureus un C. difficile.
Ir pieejamas dažādas ierīces, kas atšķiras pēc izmaksām, izmantotā procesa un lauka testēšanas veida.
Izplatīta procedūra ir ūdeņraža peroksīda šķīduma iztvaicēšana noslēgtā telpā, piemēram, pacientu telpā, lai dekontaminētu virsmas.
Pēcapstrādes aerācija nav nepieciešama, jo ūdeņraža peroksīds viegli sadalās skābeklī un ūdenī.
Sporu sloksnes (IB) ir stratēģiski novietotas visā telpā un tiek iegūtas vēlāk, lai uzraudzītu procesa efektivitāti.
Trūkumi ietver nesaderību ar celulozes materiāliem un iespējamu elektronisko ierīču koroziju.
Uz vietas radīto hlora dioksīdu var atbrīvot kā gāzi, lai dekontaminētu telpu.
Telpām jābūt ne tikai noslēgtām, bet arī aptumšotām, lai nepieļautu, ka saules gaisma paātrina gāzes noārdīšanos.
Tāpat kā ūdeņraža peroksīds, hlora dioksīds dabiski sadalās nekaitīgos blakusproduktos.
Ozons var dekontaminēt virsmas slēgtās telpās; tas ir ļoti nestabils un potenciāli kaitīgs dažādiem materiāliem, kas parasti atrodami veselības aprūpes iestādēs.
Tomēr tirdzniecībā ir pieejams uz ozonu balstīts medicīnas ierīču sterilizators.
Gāzi ģenerē no skābekļa un cikla beigās katalīzes ceļā pārvērš to skābeklī un ūdenī.
Šim instrumentam tiek pieprasīta plaša materiālu savietojamība un spēja rīkoties ar plānām ierīcēm.
ULTRAVIOLETAIS STAROJUMS
Jaunākie sasniegumi ultravioletās (UV) gaismas tehnoloģijā padara maza diapazona UV starojuma mikrobicīdu potenciālu noderīgu dažādiem lietojumiem.
UV lampas tiek plaši izmantotas ūdens un notekūdeņu dezinfekcijai.
Uz UV bāzes ražotas ierīces tiek tirgotas gaisa dezinfekcijai slimnīcās un klīnikās, lai samazinātu gaisā esošo patogēnu izplatību.
Šīs ierīces tiek tirgotas arī slimnīcu vides virsmu dezinfekcijai.
UV starojums apstrādātajam ūdenim un gaisam nepievieno nekādas ķīmiskas vielas, izņemot zemu ozona līmeni.
Tomēr tas nevar iekļūt netīrumos, un objektiem ir nepieciešama tieša starojuma iedarbība.
Šādām lampām nepieciešama normāla tīrīšana un periodiska nomaiņa; tie var izstarot redzamo gaismu pat pēc UV starojuma samazināšanās.
Norādes:
1. Medicīnas instrumentācijas attīstības asociācija. Ķīmiskā sterilizācija un augsta līmeņa dezinfekcija veselības aprūpes iestādēs. ANSI/ AAMI ST58:2013.
2. Medicīnas instrumentācijas attīstības asociācija. Visaptveroša rokasgrāmata par sterilizāciju ar tvaiku un sterilitātes nodrošināšanu veselības aprūpes iestādēs. ANSI/AAMI/ST79:2010/A4:2013.
3. Vadlīnijas vides infekciju kontrolei veselības aprūpes iestādēs; CDC un Veselības aprūpes infekciju kontroles prakses konsultatīvās komitejas (HICPAC) ieteikumi. MMWR 2003; 52(RR10):1-42. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf
4. Zāļu un veselības aprūpes produktu regulatīvā aģentūra, Apvienotās Karalistes Veselības departaments: Dekontaminācija un infekciju kontrole; Vadlīnijas par dekontamināciju un infekciju kontroli, tostarp ķirurģiskiem instrumentiem, zobārstniecības aprīkojumu, endoskopiem un galda tvaika sterilizatoriem, 2014. gada decembris. http://www.mhra.gov.uk/Publications/Safetyguidance/Otherdevicesafetyguidance/CON007438
5. Ontario Veselības un ilgtermiņa aprūpes ministrija. Provinces infekcijas slimību padomdevēja komiteja (PIDAC). Tīrīšanas, dezinfekcijas un sterilizācijas paraugprakse visās veselības aprūpes iestādēs, 2012. http://www.publichealthontario.ca/en/eRepository/Best_Practices_Environmental_Cleaning_2012. pdf.
6. Rutala WA, Weber DJ. Vadlīnijas par dezinfekciju un sterilizāciju veselības aprūpes iestādēs, 2008. Slimību kontroles un profilakses centri, Atlanta, GA. http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/ Disinfection_Nov_2008.pdf
7. Spaulding EH. Medicīnisko un ķirurģisko materiālu ķīmiskā dezinfekcija. Dezinfekcija, sterilizācija un konservēšana, 3. izdevums, S bloks (Ed), 1968, Lea & Febiger, Philadelphia, PA.
8. Starptautiskais standarts ISO 15883-3; 2010, Mazgātājs-dezinficētājs. Norāda īpašas prasības mazgāšanas un dezinfekcijas ierīcēm (WD), ko paredzēts izmantot konteineru iztukšošanai, skalošanai, tīrīšanai un termiskai dezinfekcijai, ko izmanto cilvēku atkritumu glabāšanai, lai tos iznīcinātu vienā darbības ciklā. http://www.iso.org/iso/catalogue_detail.htm?csnumber=41078
9. Sattar SA, Maillard JY. Slaucīšanas izšķirošā nozīme augsta pieskāriena vides virsmu dekontaminācijā: pašreizējā stāvokļa apskats un nākotnes virzieni. Am J Infect Control 2013; 41:S97-S104.
10. Weber DJ, Rutala WA, Miller MB u.c. Slimnīcu virsmu loma jaunu ar veselības aprūpi saistītu patogēnu pārnēsāšanā: norovīruss, Clostridium difficile un Acinetobacter sugas. Am J Infect Control 2010; 38 (5. pielikums): S1-25.
11. Rutala WA, Weber DJ. Ar prionu piesārņotu medicīnisko instrumentu dezinfekcijas un sterilizācijas vadlīnijas. Infect Control Hosp Epidemiol 2010;31(2):107-17. doi: 10.1086/650197.
12. Muscarella LF. Pret karbapenēmu rezistentu Enterobacteriaceae un saistīto “superbaktēriju” pārnešanas risks kuņģa-zarnu trakta endoskopijas laikā. World J Gastrointest Endosc 2014;6:457-574. doi: 10.4253/ wjge.v6.i10.457.
13. Snaiders, OP. Termometru kalibrēšana verdošā ūdenī: viršanas temperatūra / atmosfēras spiediens / augstuma tabulas. http://www.hi-tm.com/Documents/Calib-boil.html [Ultimo accesso 17 agosto 2015]
14. Kanemitsu K, Imasaka T, Ishikawa S u.c. Etilēnoksīda gāzes, ūdeņraža peroksīda gāzes plazmas un zemas temperatūras tvaika formaldehīda sterilizācijas salīdzinošs pētījums. Infect Control Hosp Epidemiol 2005;26(5):486-9.
15. Seavey R. Augsta līmeņa dezinfekcija, sterilizācija un antisepsi: aktuālās problēmas medicīnas un ķirurģisko instrumentu pārstrādē. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl): S111-7. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.030.
16. Rutala WA, Weber DJ. Jauni sasniegumi puskritisku priekšmetu pārstrādē. Am J Infect Control 2013;41 (5 Suppl): S60-6. doi: 10.1016/j.ajic.2012.09.028.
17. Wilson APR, Livermore DM, Otter JA u.c. Vairāku zāļu rezistentu gramnegatīvo baktēriju profilakse un kontrole: Apvienotās darba grupas ieteikumi. J Hosp Infect 2016; 92, S1-S4.
18. Tacconelli E, Cataldo MA, Dancer SJ u.c. ESCMID vadlīnijas infekciju kontroles pasākumu pārvaldībai, lai samazinātu pret multirezistentu gramnegatīvu baktēriju pārnešanu hospitalizētiem pacientiem. Clin Microbiol Infect 2014; 20. sējums (Suppl s1), 1.–55. lpp.
Arī:
1. Fraise AP, Maillard YJ un Sattar SA. Dezinfekcijas, konservēšanas un sterilizācijas principi un prakse. 2013, 5. izd., Wiley-Blackwell Publishing, Oksforda, Anglija; ISBN-13: 978- 1444333251.
2. McDonnell G. Antisepsis, dezinfekcija un sterilizācija: veidi, darbība un pretestība; American Society for Microbiology, Vašingtona, DC, 2007. Pieejams elektroniski, izmantojot Google grāmatas http://books.google.com/books?id=5UL6BHqZKecC&printsec=frontcover&dq=Antisepsis,+desinfect ion,+and+sterilization&hl=lv&ei=Z2wvTeCBAYs8C8CgQsCBAY=7&ei= =book_result&ct=result&res num=1&ved=0CDEQ6AEwAA#v=onepage&q&f=false
3. McDonnell G. & Sheard D. Praktisks ceļvedis dekontaminācijai veselības aprūpē. Wiley-Blackwell, Čičestera, 2012.
4. Quinn, MM et al. Vides virsmu tīrīšana un dezinfekcija veselības aprūpē: ceļā uz integrētu sistēmu infekciju un arodslimību profilaksei? Am J Infect Control 2015; 43: 424-434.
5. Roth S, Feichtinger J, Hertel C. Bacillus subtilis sporu inaktivācijas raksturojums zemspiediena, zemas temperatūras gāzes plazmas sterilizācijas procesos. J Appl Microbiol 2010; 108:521-531.
6. Sattar SA. Jaunāko ķīmisko līdzekļu solījumi un kļūmes, lai novērstu nozokomiālo infekciju izplatīšanos ar vides virsmām. Am J Infect Control 2010; 38: S34-40.
7. Ogbonna A, Oyibo PG, Onu CM. Veselības darbinieku izmantoto stetoskopu baktēriju piesārņojums: ietekme uz sabiedrības veselību. J Infect Dev Ctries 2010; 4:436-441.
8. Vonberg RP, Kuijper EJ, Wilcox MH u.c. Infekcijas kontroles pasākumi, lai ierobežotu Clostridium difficile izplatību. Clin Microbiol Infect 2008; 14 (5. papildinājums): 2-20. 9. Humphries RM, McDonnell G. Superbugs on Duodenoscopes: izaicinājums tīrīšanai un dezinfekcijai atkārtoti lietojamām ierīcēm. J Clin Microbiol 2015: 53:3118-3125.
Lasīt arī:
FG MICRO H2O2: Focaccia Group ievieš jaunu sistēmu ātrās palīdzības automašīnu dezinfekcijai
Veselības aprūpes nodalījumu un vides tīrīšana, dezinfekcija un sterilizācija
Ātrās palīdzības dezinfekcija, izmantojot kompaktu atmosfēras plazmas ierīci: pētījums no Vācijas
Kā dezinficēt un pareizi iztīrīt ātro palīdzību?
Ātrās palīdzības nestuvju vibrācija: pētījums par slāpēšanas sistēmām
Pēcnāves tīrīšana, bioremediācija un sterilizācija ātrās palīdzības automašīnās